TCS SP8 MP Multiphoton Microscope
Descubra profundidades mayores
Corte del cerebro del ratón YFP, pila en Z de 720 µm
Codificación del color de profundidad.
Muestra cortesía del Dr. Mark Lessard, The Jackson Laboratory, Bar Harbor, Maine, EE. UU.
Animación en 3D del bulbo olfatorio de un ratón
Profundidad de 1,5 mm.
Cortesía del Dr. Günter Giese y de Annemarie Scherbarth, MPI Heidelberg, Alemania.
Ver a través del cerebro
El video de Nature revela cómo Karl Deisseroth y su equipo crearon visualizaciones en 3D de cerebros de ratones utilizando CLARITY y marcación fluorescente.
Cerebro de ratón Thy1-YFP tratado con CLARITY
Animación generada con visualización en 3D de LAS X.
Cortesía de Prof. Karl Deisseroth y Raju Tomer, Stanford University, Palo Alto, California, EE. UU.
Ganglio linfático del ratón con macrófagos marcados con GFP
Señal SHG de colágeno (gris).
Inyección de ARN en pez cebra (gastrulación) para tinción citoplasmática de proteína fluorescente Neptune
THG (en azul); 20x1NA; InSight en 1.140 nm.
Cortesía de BioEmergences USR3695 (IBiSA FBI), Gif sur Yvettes, Francia.
Desarrollo del embrión del pez cebra durante 21 horas
Secuencia en 4D, pilas de 420, 3 canales superpuestos: Inyección de ARN H2B (azul), mCherry (rojo), EGFPras (verde).
Cortesía de BioEmergences USR3695 (IBiSA FBI), Gif sur Yvettes, Francia.
Señal SHG y marcador de neuronas parasimpáticas en páncreas aclarado
Neuronas tirosina hidroxilasa positivas (rojo), SHG a 1.080 nm (verde), Dapi (azul).
Cortesía del Dr. Rafael Drigo, Per-Olof Berggren Laboratory, Lee Kong Chian School of Medicine (LKCSoM), Singapur.
Imagen multicolor de un embrión de pez cebra
Primordio de la línea lateral marcado con GFP (verde), neuronas con DsRed (rojo) y núcleo con BFP (azul). Señal SHG de los músculos (gris).
Cortesía del Dr. Lionel Newton, EMBL Heidelberg, Alemania.
Movimiento del calcio en ratón GCaMP3 posterior a la lesión del podocito
Movimiento del calcio posterior a la lesión del podocito (abajo a la derecha) en un glomérulo de un ratón GCaMP3. Vasculatura marcada con Texas Red.
Cortesía del Dr. Matthias Hackl, University Clinic Cologne, Alemania.
Desarrollo del Tunicado (Phallusia mammillata) durante más de 6,5 horas
Tinción del núcleo mediante inyección de ARN (H2B-eGFP, 980 nm); membrana mediante baño en FM4-64 (1.030 nm).
Cortesía de BioEmergences USR3695 (IBiSA FBI), Gif sur Yvettes, Francia.
Excitación IR y rotación en vivo simultáneas
Corte de testículo de ratón con expresión de dTomato (OPO).
Muestra cortesía del Dr. Mark Lessard, The Jackson Laboratory, Bar Harbor, Maine, EE. UU.
Imágenes de microglías en vivo en un ratón vivo y despierto
Movimiento de microglías en un ratón vivo y despierto, animación en 4D de 217 cortes y 180 segundos.
Cortesía del Dr. Masahiro Fukuda, Department of Molecular Therapy, National Institute of Neuroscience, National Center of Neurology and Psychiatry, Kodaira, Tokio, Japón.
Desarrollo del pez de superficie Astyanax mexicanus durante más de 30 horas
Inyección de ARN para tinción mediante GFP farnesilada (membranas, 980 nm) y H2B-mCherry (núcleo, 1.030 nm)
Cortesía de BioEmergences USR3695 (IBiSA FBI), Dr. Sylvie Rétaux, Dr. Hélène Hinaux y Dr. Gaëlle Recher, CNRS, Gif sur Yvette, Francia.
Ratón Thy1-EYFP in vivo, pila en Z
Ratón adulto Thy1-EYFP línea H, in vivo (ventana craneal), pila en Z de 800 µm.
Cortesía del Dr. Masahiro Fukuda, Department of Molecular Therapy, National Institute of Neuroscience, National Center of Neurology and Psychiatry, Kodaira, Tokio, Japón.
Desarrollo del pez cebra durante 17 horas
Expresión de GFP en el citoplasma en placa precordal y notocorda, 980 nm. Tinción nuclear con inyección de ARN H2B-mCherry, 1.030 nm.
Cortesía de BioEmergences USR3695 (IBiSA FBI), Gif sur Yvettes, Francia.
Ratón adulto Thy1-EYFP línea H, in vivo (ventana craneal)
Neuronas piramidales de excitación en capa 5 expresada en parte con EYFP.
Animación creada con el paquete de visualización en 3D de LAS AF 3 de Leica Microsystems.
Masahiro Fukuda, Prof. Haruo Kasai, Center for Disease Biology and…
