![](/fileadmin/_processed_/0/b/csm_lms-mica-header-07_2_629d2e54d8.jpg)
![](/fileadmin/mica/01_Header/lms-mica-header-03c_2.jpg)
![](/fileadmin/mica/01_Header/lms-mica-header-02_2.jpg)
![](/fileadmin/_processed_/4/9/csm_lms-mica-header-06_2_842fb393eb.jpg)
![](/fileadmin/_processed_/0/3/csm_lms-mica-header-01_2_64352997b6.jpg)
![](/fileadmin/_processed_/c/c/csm_lms-mica-header-05_2_4b677a2d93.jpg)
![](/fileadmin/_processed_/9/c/csm_lms-mica-header-04_2_4a49c243ad.jpg)
![](/fileadmin/_processed_/3/a/csm_lms-mica-no-constraints-title_1f66fc0885.jpg)
Células U2OS teñidas con MitoTracker verde (mitocondrias, cian) y TMRE (mitocondrias activas, magenta). Adquisición secuencial de los dos canales durante 2 minutos, 100 imágenes, utilizando el objetivo 63x/1.20 CS2 Water MotCORR.
Crecimiento de esferoides durante 2,5 días
![](/fileadmin/mica/12_Incubator/lms-mica-incubator-spheroids-growth.jpg)
Formación de esferoides 3D a partir de 1000 células MDCK MX1-GFP transfectadas establemente en cada pocillo (fila superior) y 1000 células U2OS en cada pocillo (fila inferior) mostradas en 5 puntos temporales diferentes. Time-lapse grabado durante 60 horas a intervalos de 30 minutos. GFP, verde. Contraste de modulación integrado, gris.
Formación de esferoides 3D a partir de 1000 células MDCK MX1-GFP transfectadas establemente en cada pocillo (mitad izquierda) y 1000 células U2OS por pocillo (mitad derecha). Time-lapse de 72 horas a intervalos de 30 minutos. GFP, verde. Contraste de modulación integrado, gris.
Montar la muestra
Montar la muestra
Posicionar la muestra
Posicionar la muestra
Definir iluminación 1
Iniciar la adquisición en vivo
Definir iluminación 2
Definir posiciones
Definir iluminación 3
Adquirir
Definir iluminación 4
Elegir imágenes
Definir ganancia del detector
Segmentar
Definir pinhole
Ejecutar análisis
Definir modo de barrido
Definir tiempo de píxel
Definir offset
Definir paso de línea
Definir modo de promedio
Definir método de promedio
Definir promedios
Adquirir
Procesar datos
Elegir imágenes
Definir umbrales
Definir separadores
Ejecutar segmentación
Ejecutar análisis
Extraer información
Crear figuras
![](/fileadmin/mica/18_CTA/lms-mica-product-cta.jpg)
![](/fileadmin/mica/03_Access_for_All/lms-mica-access-for-all-title.jpg)
![](/fileadmin/mica/04_Speed/lms-mica-tissue-slice-rat-brain-cropped-02.jpg)
Corte de tejido de cerebro de rata. Los núcleos están teñidos con DAPI (azul), las STL con FITC (verde), los astrocitos (GFAP) con Cy3 (amarillo) y las neuronas (NeuN) con Cy5 (rojo). Mosaico en wiedfield a 10x, los 4 marcadores adquiridos simultáneamente.
Células U2OS teñidas con MitoTracker verde (mitocondrias, cian) y TMRE (mitocondrias activas, magenta). Adquisición simultánea de los dos canales durante 2 minutos, 100 imágenes, utilizando el objetivo 63x/1.20 CS2 Water MotCORR.
![](/fileadmin/mica/07_Correlation/lms-mica-correlation-comparison.jpg)
Adquisición secuencial con un microscopio convencional
Adquisición simultánea con Mica
Células U2OS teñidas con MitoTracker verde (mitocondrias, cian) y TMRE (mitocondrias activas, magenta). Adquisición simultánea de los dos canales durante 2 minutos, 100 imágenes, utilizando el objetivo 63x/1.20 CS2 Water MotCORR.
Cultivo celular 3D, formación de esferoides (7 días) a partir de células U343. tfLC3 EGFP y mRFP + DAPI + WGA Alexa680. Objetivo: 20x/0.75 CS2 DRY
![](/fileadmin/_processed_/8/b/csm_lms-mica-magnification-1_6x-widefield-opt_eb81cac6b8.jpg)
![](/fileadmin/_processed_/e/c/csm_lms-mica-magnification-10x-widefield_11fa997311.jpg)
![](/fileadmin/_processed_/f/a/csm_lms-mica-magnification-20x-widefield_b135e7d93a.jpg)
![](/fileadmin/mica/10_Magnification/lms-mica-magnification-20x-thunder.jpg)
![](/fileadmin/mica/10_Magnification/lms-mica-magnification-63x-confocal.jpg)
![](/fileadmin/mica/10_Magnification/lms-mica-magnification-63x-lightning.jpg)
Sección de tejido intestinal adquirida con diferentes objetivos, de bajo a alto aumento (1,6x, 10x, 20x, 63x), imagen widefield y confocal. Imágenes widefield a 20x procesadas con THUNDER y confocal a 63x con LIGHTNING. Los núcleos están marcados en azul, las mitocondrias en verde y la tubulina detirosinada en rojo.
![](/fileadmin/mica/10_Magnification/lms-mica-magnification-1_6x-widefield-software.png)
![](/fileadmin/mica/10_Magnification/lms-mica-magnification-10x-widefield-software.png)
![](/fileadmin/mica/10_Magnification/lms-mica-magnification-20x-widefield-software.png)
![](/fileadmin/mica/10_Magnification/lms-mica-magnification-20x-widefield-software.png)
![](/fileadmin/mica/10_Magnification/lms-mica-magnification-63x-confocal-software.png)
![](/fileadmin/_processed_/0/d/csm_lms-mica-workflows-title_0b5f0ce36b.jpg)
![](/fileadmin/mica/16_AI/lms-mica-analysis-mitos-device.jpg)
![](/fileadmin/mica/16_AI/lms-mica-analysis-mitos.jpg)
Células U2OS marcadas con SiR-Actina, TMRE (actividad mitocondrial), CellEventTM (actividad de las caspasas) y DAPI (núcleos). Se añadió a tiempo 0 estaurosporina inductora de la apoptosis. Modo widefield, 63 aumentos. Time-lapse de 13 horas de duración.