![](/fileadmin/_processed_/0/b/csm_lms-mica-header-07_2_629d2e54d8.jpg)
![](/fileadmin/mica/01_Header/lms-mica-header-03c_2.jpg)
![](/fileadmin/mica/01_Header/lms-mica-header-02_2.jpg)
![](/fileadmin/_processed_/4/9/csm_lms-mica-header-06_2_842fb393eb.jpg)
![](/fileadmin/_processed_/0/3/csm_lms-mica-header-01_2_64352997b6.jpg)
![](/fileadmin/_processed_/c/c/csm_lms-mica-header-05_2_4b677a2d93.jpg)
![](/fileadmin/_processed_/9/c/csm_lms-mica-header-04_2_4a49c243ad.jpg)
![](/fileadmin/_processed_/3/a/csm_lms-mica-no-constraints-title_1f66fc0885.jpg)
Cellules U2OS colorées avec du vert MitoTracker (structure des mitochondries, cyan) et TMRE (mitochondries actives, magenta). Acquisition séquentielle des deux canaux sur 2 minutes 100 images avec l’objectif 63x/1.20 CS2 Water MotCORR.
Croissance sphéroïdale sur 2,5 jours
![](/fileadmin/mica/12_Incubator/lms-mica-incubator-spheroids-growth.jpg)
Formation de sphéroïdes 3D à partir de 1 000 cellules MDCK MX1-GFP transfectées de manière stable par puits (rangée supérieure) et 1 000 cellules U2OS par puits (rangée inférieure). Acquisition en timelapse sur 60 heures avec un intervalle de 30 minutes. Vert, GFP. Noir et blanc, contraste de modulation intégré.
Formation de sphéroïdes 3D à partir de 1 000 cellules MDCK MX1-GFP transfectées de manière stable par puits (moitié gauche) et 1 000 cellules U2OS par puits (moitié droite) montrées à 5 points temporels différents. Acquisition en timelapse sur 60 heures avec un intervalle de 30 minutes. Vert, GFP. Gris, contraste de modulation intégré.
Monter l’échantillon
Monter l’échantillon
Positionner l’échantillon
Positionner l’échantillon
Définir l’éclairage 1
Démarrer l’acquisition en direct
Définir l’éclairage 2
Définir les positions
Définir l’éclairage 3
Acquérir
Définir l’éclairage 4
Choisir des images
Définir le gain du détecteur
Exécuter la segmentation
Définir le trou d’épingle
Analyser
Définir le mode de balayage
Définir la durée d’arrêt
Définir le décalage
Définir le pas de ligne
Définir le mode de calcul de moyenne
Définir la méthode de calcul de la moyenne
Définir le nombre moyen
Acquérir
Traiter les données
Choisir les images
Définir les seuils
Définir les séparateurs
Exécuter la segmentation
Lancer l’analyse
Extraire les informations
Créer des figures
![](/fileadmin/mica/18_CTA/lms-mica-product-cta.jpg)
![](/fileadmin/mica/03_Access_for_All/lms-mica-access-for-all-title.jpg)
![](/fileadmin/mica/04_Speed/lms-mica-tissue-slice-rat-brain-cropped-02.jpg)
Coupe tissulaire du cerveau du rat. Noyaux colorés avec DAPI (bleu), STL avec FITC (vert), astrocytes (GFAP) avec Cy3 (jaune) et neurones nouveau-nés (NeuN) avec Cy5 (rouge). 10 tilescans à champ large, les 4 étiquettes étant acquises simultanément.
Cellules U2OS colorées avec du vert MitoTracker (structure des mitochondries, cyan) et TMRE (mitochondries actives, magenta). Acquisition simultanée des deux canaux sur 2 minutes 100 images avec l’objectif 63x/1.20 CS2 Water MotCORR.
![](/fileadmin/mica/07_Correlation/lms-mica-correlation-comparison.jpg)
Acquisition séquentielle avec un microscope conventionnel
Acquisition simultanée avec Mica
Cellules U2OS colorées avec du vert MitoTracker (structure des mitochondries, cyan) et TMRE (mitochondries actives, magenta). Acquisition simultanée des deux canaux sur 2 minutes 100 images avec l’objectif 63x/1.20 CS2 Water MotCORR.
Culture cellulaire 3D, formation de cellules U343 en sphéroïdes 7d. tfLC3 EGFP et mRFP + DAPI + WGA Alexa680. Objectif : 20x/0.75 CS2 DRY
![](/fileadmin/_processed_/8/b/csm_lms-mica-magnification-1_6x-widefield-opt_eb81cac6b8.jpg)
![](/fileadmin/_processed_/e/c/csm_lms-mica-magnification-10x-widefield_11fa997311.jpg)
![](/fileadmin/_processed_/f/a/csm_lms-mica-magnification-20x-widefield_b135e7d93a.jpg)
![](/fileadmin/mica/10_Magnification/lms-mica-magnification-20x-thunder.jpg)
![](/fileadmin/mica/10_Magnification/lms-mica-magnification-63x-confocal.jpg)
![](/fileadmin/mica/10_Magnification/lms-mica-magnification-63x-lightning.jpg)
Coupe de tissu intestinal acquise avec différents objectifs allant d’un grossissement faible à élevé (1,6x, 10x, 20x, 63x), en utilisant l’imagerie confocale et à champ large. 20 images en champ large sont traitées avec THUNDER et 63 images confocales avec LIGHTNING. Les noyaux sont marqués en bleu, les mitochondries en vert et la tubuline détyrosynée en rouge.
![](/fileadmin/mica/10_Magnification/lms-mica-magnification-1_6x-widefield-software.png)
![](/fileadmin/mica/10_Magnification/lms-mica-magnification-10x-widefield-software.png)
![](/fileadmin/mica/10_Magnification/lms-mica-magnification-20x-widefield-software.png)
![](/fileadmin/mica/10_Magnification/lms-mica-magnification-20x-widefield-software.png)
![](/fileadmin/mica/10_Magnification/lms-mica-magnification-63x-confocal-software.png)
![](/fileadmin/_processed_/0/d/csm_lms-mica-workflows-title_0b5f0ce36b.jpg)
![](/fileadmin/mica/16_AI/lms-mica-analysis-mitos-device.jpg)
![](/fileadmin/mica/16_AI/lms-mica-analysis-mitos.jpg)
Les cellules U2OS ont été marquées avec SiR-Actine, TMRE (activité des mitochondries), CellEventTM (activité des caspases) et DAPI (noyaux). De la staurosporine, inductrice d’apoptose, a été ajoutée au point temporel 0. Grossissement 63x, mode champ large. Time lapse de 13 heures.