![](/fileadmin/_processed_/0/b/csm_lms-mica-header-07_2_629d2e54d8.jpg)
![](/fileadmin/mica/01_Header/lms-mica-header-03c_2.jpg)
![](/fileadmin/mica/01_Header/lms-mica-header-02_2.jpg)
![](/fileadmin/_processed_/4/9/csm_lms-mica-header-06_2_842fb393eb.jpg)
![](/fileadmin/_processed_/0/3/csm_lms-mica-header-01_2_64352997b6.jpg)
![](/fileadmin/_processed_/c/c/csm_lms-mica-header-05_2_4b677a2d93.jpg)
![](/fileadmin/_processed_/9/c/csm_lms-mica-header-04_2_4a49c243ad.jpg)
![](/fileadmin/_processed_/3/a/csm_lms-mica-no-constraints-title_1f66fc0885.jpg)
Células U2OS tingidas com MitoTracker verde (estrutura da mitocôndria, ciano) e TMRE (mitocôndria ativa, magenta). Aquisição sequencial dos dois canais ao longo de dois minutos e 100 quadros usando a objetiva de 63x/1,20 CS2 Water MotCORR.
Crescimento esferoide ao longo de 2,5 dias
![](/fileadmin/mica/12_Incubator/lms-mica-incubator-spheroids-growth.jpg)
Formação de esferoides 3D a partir de 1000 células MDCK MX1-GFP estavelmente transfectadas por alvéolo (fileira superior) e 1000 células U2OS por alvéolo (fileira inferior). Aquisição de time-lapse ao longo de 60 horas com intervalo de 30 minutos. Verde, GFP. Contraste de modulação integrado, preto e branco.
Formação de esferoides 3D a partir de 1000 células MDCK MX1-GFP estavelmente transfectadas por alvéolo (metade esquerda) e 1000 células U2OS por alvéolo (metade direita). Aquisição de time-lapse ao longo de 72 horas com intervalo de 30 minutos. Verde, GFP. Cinza, contraste de modulação integrado.
Monte a amostra
Monte a amostra
Posicione a amostra
Posicione a amostra
Defina a iluminação 1
Pressione "One Touch"
Defina a iluminação 2
Defina as posições
Defina a iluminação 3
Capture
Defina a iluminação 4
Escolha imagens
Defina o ganho do detector
Execute a segmentação
Defina o pinhole
Execute a análise
Defina o modo de varredura
Defina o tempo de permanência
Defina o offset
Defina a etapa da linha
Defina o modo de cálculo da média
Defina o método de cálculo da média
Defina o número médio
Capture
Dados do processo
Escolha imagens
Defina limites
Defina separadores
Execute a segmentação
Execute a análise
Extraia informações
Crie números
![](/fileadmin/mica/18_CTA/lms-mica-product-cta.jpg)
![](/fileadmin/mica/03_Access_for_All/lms-mica-access-for-all-title.jpg)
![](/fileadmin/mica/04_Speed/lms-mica-tissue-slice-rat-brain-cropped-02.jpg)
Fatia de tecido do cérebro de rato. Os núcleos são tingidos com DAPI (azul), STL com FITC (verde), astrócitos (GFAP) com Cy3 (amarelo) e neurônios recém-nascidos (NeuN) com Cy5 (vermelho). Varredura de bloco de campo largo de 10x, todos os quatro marcadores adquiridos simultaneamente.
Células U2OS tingidas com MitoTracker verde (estrutura da mitocôndria, ciano) e TMRE (mitocôndria ativa, magenta). Aquisição simultânea dos dois canais ao longo de dois minutos e 100 quadros usando a objetiva de 63x/1,20 CS2 Water MotCORR.
![](/fileadmin/mica/07_Correlation/lms-mica-correlation-comparison.jpg)
Aquisição sequencial com um microscópio convencional
Aquisição simultânea com o Mica
Células U2OS tingidas com MitoTracker verde (estrutura da mitocôndria, ciano) e TMRE (mitocôndria ativa, magenta). Aquisição simultânea dos dois canais ao longo de dois minutos e 100 quadros usando a objetiva de 63x/1,20 CS2 Water MotCORR.
Cultura celular 3D, formação de esferoide 7d de células U343. tfLC3 EGFP e mRFP + DAPI + WGA Alexa680. Objetiva: 20x/0.75 CS2 SECA
![](/fileadmin/_processed_/8/b/csm_lms-mica-magnification-1_6x-widefield-opt_eb81cac6b8.jpg)
![](/fileadmin/_processed_/e/c/csm_lms-mica-magnification-10x-widefield_11fa997311.jpg)
![](/fileadmin/_processed_/f/a/csm_lms-mica-magnification-20x-widefield_b135e7d93a.jpg)
![](/fileadmin/mica/10_Magnification/lms-mica-magnification-20x-thunder.jpg)
![](/fileadmin/mica/10_Magnification/lms-mica-magnification-63x-confocal.jpg)
![](/fileadmin/mica/10_Magnification/lms-mica-magnification-63x-lightning.jpg)
Seção de tecido intestinal adquirida com diferentes objetivas variando da ampliação baixa à alta (1,6x, 10x, 20x, 63x), usando aquisição de imagens de campo amplo e confocal. As imagens de campo amplo de 20x são processadas com imagens THUNDER e confocais de 63x com LIGHTNING. Os núcleos são marcados em azul, a mitocôndria em verde e a tubulina detironisada em vermelho.
![](/fileadmin/mica/10_Magnification/lms-mica-magnification-1_6x-widefield-software.png)
![](/fileadmin/mica/10_Magnification/lms-mica-magnification-10x-widefield-software.png)
![](/fileadmin/mica/10_Magnification/lms-mica-magnification-20x-widefield-software.png)
![](/fileadmin/mica/10_Magnification/lms-mica-magnification-20x-widefield-software.png)
![](/fileadmin/mica/10_Magnification/lms-mica-magnification-63x-confocal-software.png)
![](/fileadmin/_processed_/0/d/csm_lms-mica-workflows-title_0b5f0ce36b.jpg)
![](/fileadmin/mica/16_AI/lms-mica-analysis-mitos-device.jpg)
![](/fileadmin/mica/16_AI/lms-mica-analysis-mitos.jpg)
As células U2OS foram marcadas com SiR-Actina, TMRE (atividade de mitocôndria), CellEvent™ (atividade de caspase) e DAPI (núcleos). A estaurosporina indutora de apoptose foi adicionada no ponto temporal 0. Amplicação de 63x no modo de campo amplo. Time-lapse de 13 horas.